Summary
Abstract
Introduction
Protocol
Representative Results
Discussion
Acknowledgements
Materials
References
Biology
For at opnå et axenisk insekt steriliseres dets ægoverflade, og den klækkede larve opdrættes efterfølgende ved hjælp af axeniske blade. Denne metode giver en effektiv måde til axenisk insektforberedelse uden at administrere antibiotika eller udvikle en kunstig kost, som også kan anvendes på andre bladspisende insekter.
Insektindvolde koloniseres af forskellige bakterier, der kan påvirke værtens fysiologiske træk dybt. Introduktion af en bestemt bakteriestamme i et axenisk insekt er en kraftfuld metode til at verificere tarmens mikrobielle funktion og belyse de mekanismer, der ligger til grund for tarmmikrobe-værtsinteraktioner. Administration af antibiotika eller sterilisering af ægoverflader er to almindeligt anvendte metoder til at fjerne tarmbakterier fra insekter. Ud over de potentielle bivirkninger af antibiotika på insekter viste tidligere undersøgelser imidlertid, at fodring af antibiotika ikke kunne eliminere tarmbakterier. Således anvendes kimfri kunstige kostvaner generelt til at opretholde axeniske insekter, hvilket er en kedelig og arbejdskrævende proces, der ikke fuldt ud kan ligne ernæringsmæssige komponenter i naturlig mad. Beskrevet her er en effektiv og enkel protokol til forberedelse og vedligeholdelse af axeniske larver af en bladbille (Plagiodera versicolora). Specifikt blev overflader af billeæggene steriliseret, hvorefter kimfrie poppelblade blev brugt til at bagakseniske larver. Insekternes axoniske status blev yderligere bekræftet via kulturafhængige og kulturuafhængige analyser. Samlet set blev der ved at kombinere ægdesinfektion og kimfri dyrkning udviklet en effektiv og bekvem metode til at opnå axenisk P. versicolora, hvilket giver et let overførbart værktøj til andre bladspisende insekter.
I lighed med pattedyr er insektets fordøjelseskanalen et hulrum til fordøjelse og absorption af fødevarer. De fleste insekter har forskellige kommensale bakterier, der trives i deres tarme og lever af ernæring leveret af værter1. Tarmkommensalsamfundet har en dybtgående indvirkning på flere fysiologiske processer i insekter, herunder fordøjelse og afgiftning af fødevarer 2,3,4, ernæring og udvikling 5,6,7, forsvar mod patogener og parasitter....
1. Insektopdræt
Livsstadierne i P. versicolora er vist i figur 1. Den voksne han er mindre end den voksne hun (figur 1A). I marken klynger billen sine æg på et blad; her blev fire æg løsrevet fra et blad (figur 1B). Poppelstammesegmenterne og kimplanterne, der anvendes til axenisk insektopdræt, er vist i figur 2. Tarmen hos en 3. instar larve er vist i figur 3, og .......
Fremstilling af kimfrie larver og opnåelse af gnobiotiske larver ved at genindføre specifikke bakteriestammer er kraftfulde metoder til at belyse de mekanismer, der ligger til grund for værtsmikrobeinteraktioner. Nyklækkede larver opnår tarmmikrobiota på to hovedmåder: vertikal transmission fra moderen til afkom eller vandret erhvervelse fra søskende og miljøet34. Førstnævnte kan opfyldes ved forældreoverførsel til afkom gennem forurening af ægoverfladen35. De.......
Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.22 µm syringe filters | Millipore | SLGP033RB | |
1 mg/mL NAA stock solution | a. Prepare 0.1 M NaOH solution (dissolve 0.8 g NaOH in 200 mL of distilled water). b. Add 0.2 g NAA in a 250 mL beaker, add little 0.1 M NaOH solution until NAA dissolved, and adjust the final volume to 200 mL with distilled water. c. Filter the solution to remove bacteria with a 0.22 µm syringe filter and a 50 mL sterile syringe, subpackage the solution in 1.5 mL centrifuge tubes and restore at -20 °C. | ||
1.5 mL microcentrifuge tubes | Sangon Biotech | F600620 | |
10x PBS stock solution | Biosharp Life Sciences | BL302A | |
2 M KOH solution | Dissolve 22.44 g KOH (molecular weight: 56.1) in 200 mL of distilled water and autoclave it for 20 min at 121 °C. | ||
250 mL and 2,000 mL beakers | Shubo | sb16455 | |
50 mL sterile syringes | Jinta | JT0125789 | |
500 mL measuring cylinder | Shubo | sb1601 | |
50x TAE stock solution | a. Dissolve 242 g Tris and 18.612 g EDTA in 700 mL of distilled water. b. Adjust pH to 7.8 with about 57.1 mL of acetic acid. c. Adjust the final volume to 1,000 mL. d. The stock solution was diluted to 1x TAE buffer when used. | ||
75% ethanol | Xingheda trade | ||
α-naphthalene acetic acid (NAA) | Solarbio Life Sciences | 86-87-3 | |
Absorbing paper | 22.3 cm x 15.3 cm x 9 cm | ||
Acetic acid | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Agar | Coolaber | 9002-18-0 | |
Agarose | Biowest | 111860 | |
Autoclave | Panasonic | MLS-3781L-PC | |
Bead-beating homogenizer | Jing Xin | XM-GTL64 | |
DNA extraction kit | MP Biomedicals | 116560200 | |
EDTA | Saiguo Biotech | 1340 | |
Filter paper | Jiaojie | 70 mm diameter | |
Gel electrophoresis unit | Bio-rad | 164-5052 | |
Gel Signal Green nucleic acid dye | TsingKe | TSJ003 | |
Germ-free poplar seedlings | Shan Xin poplar from Ludong University in Shandong Province | ||
Golden Star Super PCR Master Mix (1.1×) | TsingKe | TSE101 | |
Growth chamber | Ruihua | HP400GS-C | |
LB agar medium | a. Dissolve 5 g tryptone, 5 g NaCl, 2.5 g yeast extract in 300 mL of distilled water. b. Adjust the final volume to 500 mL, transfer the solution to a 1,000 mL conical flask, and add 7.5 g agar. c. Autoclave the medium for 20 min at 121 °C. | ||
Mini centrifuge | DRAGONLAB | D1008 | |
MS basic medium | Coolaber | PM1121-50L | M0245 |
MS solid medium for germ-free poplar seedling culture | a. Dissolve 4.43 g MS basic medium powder and 30 g sucrose in 800 mL of distilled water. b. Adjust the pH to about 5.8 with 2 M KOH by a pH meter. c. Adjust the final volume to 1,000 mL, separate into two parts, transfer into two 1,000 mL conical flasks, and add 2.6 g agar per 500 mL. d. Autoclave for 20 min at 121 °C. | ||
NanoDrop 1000 spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific | ||
Paintbrush | 1 cm width, used to collect the eggs | ||
Parafilm | Bemis | PM-996 | |
PCR Thermal Cyclers | Eppendorf | 6331000076 | |
Petri dishes | Supin | 90 mm diameter | |
pH meter | METTLER TOLEDO | FE20 | |
Pipettes 0.2-2 µL | Gilson | ECS000699 | |
Pipettes 100-1,000 µL | Eppendorf | 3120000267 | |
Pipettes 20-200 µL | Eppendorf | 3120000259 | |
Pipettes 2-20 µL | Eppendorf | 3120000232 | |
Plant tissue culture container | Chembase | ZP21 | 240 mL |
Plastic box | 2.35 L | ||
Potassium hydroxide (KOH) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Primers for amplifying the bacterial 16S rRNA gene | Sangon Biotech | 27-F: 5’-ACGGATACCTTGTTACGAC-3’, 1492R: 5’-ACGGATACCTTGTTACGAC-3’ | |
Sodium chloride (NaCl) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Sodium hydroxide (NaOH) | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Steel balls | 0.25 mm | used to grind tissues | |
Stereomicroscope | OLYMPUS | SZ61 | |
Sucrose | Sinopharm Chemical Reagent Co. Ltd | ||
Trans2K plus II DNA marker | Transgene Biotech | BM121-01 | |
Tris base | Biosharp Life Sciences | 1115 | |
Tryptone | Thermo Fisher Scientific | LP0037 | |
UV transilluminator | Monad Biotech | QuickGel 6100 | |
Vortexer | Scilogex | MX-S | |
Willow branches | Sha Lake Park, Wuhan, China | ||
Willow leaf beetle | Huazhong Agricultural University, Wuhan, China | ||
Yeast extract | Thermo Fisher Scientific | LP0021 |
ABOUT JoVE
Copyright © 2024 MyJoVE Corporation. All rights reserved